
Product details
非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒
批準文号:獸藥生字191538869
檢測方法:熒光PCR
産品規格:50份/盒
保存條件:A盒室溫,B盒-20℃以(yǐ)下保存
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産品介紹
【獸藥名稱】非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒
【主要(yào / yāo)成分與含量】
組分
數量
消化液
1瓶(11ml)
DNA結合液
1瓶(11ml)
DNA洗滌液
1瓶(52ml)
DNA洗脫液
1瓶(4ml)
蛋白酶K
1管(1.1ml)
無菌無核酸酶水
1管(600µl)
PCR擴增反應液
1管(600µl)
實時(shí)熒光混合液
1管(155µl)
陽性對照
1管(600µl)
陰性對照
1管(600µl)
DNA吸附柱和(hé / huò)收集管
1袋(50套)
【作用與用途】用于(yú)豬全血、血清、脾髒、淋巴結、肌肉等組織樣品及糞便樣品中非洲豬瘟病毒DNA的(de)檢測。
【用法與判定】
1 用法
1.1 樣品采集、保存及運輸
1.1.1 樣品采集
1.1.1.1 活豬樣品 無菌采集EDTA抗凝血,或采血後按常規方法分離血清。
1.1.1.2 病死豬或屠宰豬樣品 無菌采集脾髒、淋巴結、肌肉等組織樣品。
1.1.1.3 病豬所處環境樣品 采集糞便樣品。
1.1.2 樣品保存 所有待檢樣品在(zài)2~8℃保存應不(bù)超過24小時(shí);在(zài)-20℃保存應不(bù)超過6個(gè)月;長期保存時(shí),以(yǐ)-70℃以(yǐ)下爲(wéi / wèi)宜。
1.1.3 樣品運輸 樣品一(yī / yì /yí)定要(yào / yāo)放置在(zài)有幹冰或冰塊的(de)冷藏包中,保持全程冷鏈運輸。要(yào / yāo)求在(zài)運輸至實驗室時(shí),幹冰仍覆蓋标本或冰塊仍未完全融化。
1.2 樣品處理
1.2.1 抗凝血和(hé / huò)血清處理 取抗凝血或血清200µl,置1.5ml滅菌離心管中。
1.2.2 組織樣品處理 分别從待檢組織三個(gè)不(bù)同的(de)部位稱取樣品約1g,用手術剪剪碎混勻,再取0.05g于(yú)研磨器中研磨,加入1.5ml生理鹽水繼續研磨,待勻漿後轉至1.5ml滅菌離心管中,8000r/min離心2分鍾,取上(shàng)清液200µl,置1.5ml滅菌離心管中。
1.2.3 糞便樣品處理 取0.3g樣品于(yú)研磨器中研磨,加入1.5ml生理鹽水繼續研磨,待勻漿後轉至1.5ml滅菌離心管中,8000r/min離心2分鍾,取上(shàng)清液200µl,置1.5ml滅菌離心管中。
1.2.4 陽性對照處理 取陽性對照200µl,置1.5ml滅菌離心管中。
1.2.5 陰性對照處理 取陰性對照200µl,置1.5ml滅菌離心管中。
1.3 病毒DNA的(de)提取
1.3.1 取已處理的(de)樣品、陰性對照和(hé / huò)陽性對照,分别加入200µl消化液和(hé / huò)20µl蛋白酶K,振蕩混勻後,置56℃水浴中消化,每5分鍾渦旋振蕩一(yī / yì /yí)次,共消化15分鍾。
1.3.2 從水浴鍋中取出(chū)樣品管,降至室溫後,加入200μl DNA結合液,颠倒混勻,将全部液體移入吸附柱中(吸附柱要(yào / yāo)套上(shàng)收集管,吸取液體時(shí)盡量不(bù)要(yào / yāo)吸到(dào)懸浮雜質,以(yǐ)免離心時(shí)堵塞吸附柱),室溫靜置3分鍾,10000r/min離心30秒。
1.3.3 棄去收集管中液體,加入500μl DNA洗滌液,10000r/min離心30秒。
1.3.4 重複步驟1.3.3。
1.3.5 棄去收集管中液體,10000r/min空柱離心1分鍾,以(yǐ)除去殘留的(de)DNA洗滌液。
1.3.6 将吸附柱放入新的(de)1.5ml離心管中,向柱中央加入DNA洗脫液50μl,室溫放置2分鍾,10000r/min離心30秒,離心管中液體即爲(wéi / wèi)模闆DNA。
1.4 實時(shí)熒光PCR操作
1.4.1 反應體系配制 設被檢樣品、陰性對照和(hé / huò)陽性對照的(de)份數總和(hé / huò)爲(wéi / wèi)N,按如下反應體系配制:
無菌無核酸酶水
6.4×(N+1)µl
PCR擴增反應液
10×(N+1)µl
實時(shí)熒光混合液
2.6×(N+1)µl
合計
19×(N+1)µl
将以(yǐ)上(shàng)配制的(de)反應體系充分混勻後,分裝至每個(gè)反應管中各19µl。分别取1.3.6中DNA 1µl,加入相應反應管中,蓋緊管蓋後5000r/min離心30秒。
1.4.2 擴增 将反應管放入熒光PCR儀内,記錄樣本擺放順序。反應參數爲(wéi / wèi)95℃預變性2分鍾;95℃變性5秒,58℃退火延伸15秒,共40個(gè)循環,熒光收集設置在(zài)每次循環的(de)退火延伸結束時(shí)進行(報告基團“FAM”,淬滅基團“NONE”)。
2 判定
2.1 結果分析條件設定 阈值設定原則:阈值線超過陰性對照擴增曲線的(de)最高點,且相交于(yú)陽性對照擴增曲線進入指數增長期的(de)拐點,或根據儀器噪聲情況進行調整。每個(gè)樣品反應管内的(de)熒光信号到(dào)達設定的(de)阈值時(shí)所經曆的(de)循環數即爲(wéi / wèi)Ct值。
2.2 結果成立條件 陽性對照Ct值<30并出(chū)現特異的(de)擴增曲線,陰性對照無Ct值且無特異的(de)擴增曲線,試驗結果成立。
2.3 結果判定
2.3.1 被檢樣品Ct值≤35并出(chū)現特異的(de)擴增曲線,判爲(wéi / wèi)非洲豬瘟病毒核酸陽性。
2.3.2 被檢樣品無Ct值或Ct值≥40且無特異的(de)擴增曲線,判爲(wéi / wèi)非洲豬瘟病毒核酸陰性。
2.3.3 被檢樣品35<Ct值<40并出(chū)現特異的(de)擴增曲線,判爲(wéi / wèi)非洲豬瘟病毒核酸疑似,對疑似樣品,需重新取樣提取DNA,按雙倍模闆量(即2µl DNA)進行複檢,Ct值<40并出(chū)現特異的(de)擴增曲線判爲(wéi / wèi)陽性,否則判爲(wéi / wèi)陰性。
【注意事項】
(1)所有試劑應在(zài)規定的(de)溫度下保存。
(2)實驗室應分配液區、模闆提取區和(hé / huò)擴增區。工作流程順序爲(wéi / wèi)配液區→模闆提取區→擴增區。各區器材試劑專用,不(bù)可跨區使用。實驗結束後立即用1%次氯酸鈉或75%酒精或紫外燈消毒工作台。
(3)PCR擴增反應液應置于(yú)冰盒上(shàng)使用,其餘冷凍保存的(de)試劑使用前應室溫融化,再8000r/min離心15秒,使液體全部沉于(yú)管底。用畢所有試劑立即放回原處。
(4)離心管、吸頭等在(zài)實驗前應全部高壓滅菌。用滅菌的(de)鑷子(zǐ)夾取離心管,打開和(hé / huò)蓋上(shàng)離心管蓋時(shí)避免手和(hé / huò)手套接觸離心管口,若離心管開蓋時(shí)有液體粘在(zài)手上(shàng)或濺出(chū),應立即更換手套。
(5)提取的(de)樣品,短期内使用放置于(yú)2~8℃或冰上(shàng),長期應在(zài)-70℃以(yǐ)下保存,但仍以(yǐ)新鮮提取的(de)樣品效果最好。
(6)反應體系在(zài)特定配液區配制,配制和(hé / huò)分裝反應體系時(shí)應盡量避免産生氣泡,上(shàng)機前,5000r/min離心30秒,檢查各反應管是(shì)否蓋緊,以(yǐ)免熒光物質洩露污染儀器,整個(gè)實驗過程應嚴格控制污染。
(7)嚴格遵守操作說(shuō)明可以(yǐ)獲得最好的(de)結果。操作過程中移液、定時(shí)、轉速等全部參數必須精确。
(8)注意防止試劑盒組分受污染。不(bù)要(yào / yāo)使用超過有效期限的(de)試劑,不(bù)同批次試劑盒之(zhī)間的(de)組分不(bù)要(yào / yāo)混用。
(9)所有用于(yú)檢測的(de)廢棄物品均應放入含消毒液的(de)廢物缸内,高壓滅菌處理。
【規格】50份/盒
【批準文号】獸藥生字191538869